TECNOLOGIE RICOMBINANTI E INGEGNERIA GENETICA
cod. 1006122

Anno accademico 2022/23
2° anno di corso - Secondo semestre
Docenti
Settore scientifico disciplinare
Biologia applicata (BIO/13)
Ambito
Discipline biotecnologiche con finalità specifiche: biologiche e industriali
Tipologia attività formativa
Caratterizzante
55 ore
di attività frontali
6 crediti
sede: PARMA
insegnamento
in ITALIANO

Obiettivi formativi

L’obiettivo del corso è quello di fornire agli studenti una conoscenza teorica e pratica delle metodologie alla base delle tecnologie ricombinanti.
Al termine del corso, lo studente dovrebbe essere in grado di:
- capire l'importanza e le finalità del clonaggio genico e conoscere le principali tecniche e gli strumenti necessari per manipolare in vitro ed in vivo le macromolecole biologiche (CONOSCENZA E CAPACITÀ DI COMPRENSIONE).
- Progettare la strategia migliore per effettuare l’inserimento di un frammento di DNA d’interesse in un vettore di clonaggio, definendo le metodologie analitiche necessarie per svolgere in modo corretto l’analisi dei cloni ricombinanti. Essere in grado stilare un rapporto di ricerca per esporre i risultati ottenuti (CAPACITÀ DI APPLICARE CONOSCENZA E COMPRENSIONE).
- Saper valutare quale metodologia sia la migliore per eseguire un esperimento di clonaggio genico (AUTONOMIA DI GIUDIZIO).
- Essere in grado di esporre i risultati ottenuti in un esperimento di clonaggio genico in modo chiaro e pertinente anche ad un pubblico non esperto (ABILITÀ COMUNICATIVE).
- Essere in grado di comprendere testi di natura tecnica e specialistica, utilizzando fonti in lingua italiana ed in lingua inglese (CAPACITÀ DI APPRENDIMENTO).

Prerequisiti

Sono necessarie conoscenze di biologia generale, microbiologia, biochimica, chimica e una buona conoscenza della lingua inglese.

Contenuti dell'insegnamento

- I principi fondamentali del clonaggio genico
- Enzimi utilizzati in ingegneria genetica
- Isolamento e purificazione di DNA genomico e plasmidico
- Elettroforesi di acidi nucleici
- Vettori di clonaggio batterici
- Vettori fagici: lambda e M13
- Sintesi in vitro di DNA (PCR)
- Mutagenesi mediata da PCR
- Vettori di clonaggio eucariotici
- Costruzione ed analisi di librerie genomiche
- Purificazione di RNA messaggero e conversione in cDNA
- Costruzione ed analisi di librerie a cDNA
- Sequenziamento del DNA

Programma esteso

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Bibliografia

- Gene Cloning and DNA Analysis: An Introduction, 7th Edition. Terry A. Brown. Zanichelli
- Dai geni ai genomi. Dale, von Schantz – EdiSES
- Analisi dei geni e genomi. Richard J.Reece – EdiSES
- Ingegneria genetica. Principi e tecniche. S. Primrose et al. Zanichelli
- DNA Ricombinante - J.D.Watson et al. Zanichelli
- Molecular biotechnology : principles and applications of recombinant DNA. Glick, Bernard R.
- Molecular biology: principles of genome function. Oxford university press

Metodi didattici

Il corso è organizzato in:
- lezioni frontali da parte del docente;
- esercitazioni pratiche in laboratorio.

Modalità verifica apprendimento

Gli studenti possono scegliere tra due modalità di esame:
- una prova scritta che consiste in tre domande a risposta aperta sui diversi argomenti affrontati durante il corso e due domande con esercizi (sul clonaggio genico e la PCR);
- un esame interamente orale (per gli studenti Erasmus e per gli studenti che hanno seguito il corso prima del 2013/14).
In entrambi i casi, per poter sostenere l’esame lo studente deve preparare una relazione sulle esercitazioni di laboratorio che verrà valutata in sede di esame dalla commissione.
La prova scritta e la relazione sui laboratori verificano le conoscenze acquisite, la capacità dello studente di applicarle a problemi pratici di laboratorio e la sua autonomia di giudizio. L'esame orale verifica le conoscenze acquisite dallo studente e le capacità comunicative. In tutti i casi, si verifica la capacità di apprendimento.

Altre informazioni

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Obiettivi agenda 2030 per lo sviluppo sostenibile

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